ARTÍCULO ORIGINAL
Hibridación in situ fluorescente: herramienta en el diagnóstico de las hemopatías malignas
Fluorescence in situ hybridization: diagnostic tool for hematological malignancies
Dra. Kalia Lavaut Sánchez, Lic. Norbelys Hernández Aguilar, Lic. Vera Ruiz Moleón
Instituto de Hematología e Inmunología. La Habana, Cuba.
RESUMEN
Introducción:
las neoplasias hematológicas tienen origen clonal y se caracterizan por
presentar gran heterogeneidad genética. El desarrollo de la citogenética
molecular a través de la hibridación in situ por fluorescencia
(FISH, por su sigla en inglés) se convirtió en un avance importante
en el diagnóstico citogenético de estas neoplasias.
Objetivo: describir las alteraciones cromosómicas detectadas en
pacientes con neoplasias hematológicas a partir de la introducción
de esta técnica.
Métodos: se realizó un estudio descriptivo de tipo transversal
de pacientes con neoplasias hematológicas en el Laboratorio de Citogenética
del Instituto de Hematología e Inmunología (IHI), en el período
comprendido entre julio de 2014 y abril de 2015. Se utilizó la técnica
de FISH con las sondas fluorescentes específicas.
Resultados: se estudiaron 87 muestras correspondientes a diferentes
tipos de neoplasias hematológicas. Con la sonda LSI BCR/ABL se observaron
18 casos positivos de leucemia mieloide crónica y los ocho pacientes con
leucemia linfoide aguda fueron negativos. Se marcaron con sonda PML/RARα
17 muestras con diagnóstico de leucemia promielocítica: 10 fueron
positivas. Se procesaron 8 muestras con la sonda LSI RUNX1/RUNX1T1, una resultó
positiva. Dos muestras marcadas con sonda LSI RB1 (13q14) y una con LSI TP53
(17p13.1), resultaron negativas. se observó un caso positivo de deleción
7q31.
Conclusiones: a pesar de que la muestra estudiada es pequeña, resulta
importante reportar los primeros resultados como evidencia de la incorporación
de la técnica de FISH en el IHI, lo que constituye una nueva herramienta
para el diagnóstico, pronóstico y seguimiento de las neoplasias hematológicas.
Palabras clave: hibridación in situ fluorescente, neoplasia hematológica, leucemia.
ABSTRACT
Introduction:
hematological neoplasias have clonal origin and are characterized by great genetic
heterogeneity. The development of molecular cytogenetic through fluorescence
in situ hybridization (FISH) became a major advance in the cytogenetic
diagnosis of these neoplasias.
Aim: to describe chromosomal abnormalities detected in patients with
hematological malignancies after the introduction of this technique.
Methods: a descriptive cross-sectional study of patients with hematological
malignancies was performed. Their bone marrow samples were processed at the
Laboratory of Cytogenetics of the Institute of Hematology and Immunology, between
July 2014 and April 2015. FISH technique was used along with various fluorescent
probes.
Results: 87 samples were studied. With LSI BCR / ABL probe, 18 samples
were positive of chronic myeloid leukemia and 8 patients with diagnostic of
acute lymphoblastic leukemia were negative. With PML/RARα probe 17 samples
of patients with promyelocytic leukemia were labeled, 10 were positive. Eight
samples were labeled with probe RUNX1 / RUNX1T1, one was positive. Two samples
for LSI probes labeled RB1 (13q14) and one with LSI TP53 (17p13.1) were negative.
One positive case 7q31 deletion was observed.
Conclusions: despite the sample is small, we consider it important to
report our first results as evidence of the incorporation of the FISH technique
at the IHI, which constitutes a new tool for the diagnosis, prognosis and monitoring
of hematological malignances.
Keywords: fluorescence in situ hybridization, hematologic malignancy, leukemia.
INTRODUCCIÓN
Las neoplasias hematológicas tienen origen clonal y se caracterizan por presentar gran heterogeneidad genética. Varios mecanismos genéticos se relacionan con el origen de estas dolencias, entre ellos las alteraciones cromosómicas numéricas y estructurales, principalmente deleciones, inversiones y translocaciones. Estas alteraciones conducen a la activación de protooncogenes o a la inactivación de genes supresores de tumores, los cuales promueven la inestabilidad genómica. El análisis citogenético en estas enfermedades es una importante herramienta para definir el diagnóstico, predecir el pronóstico, evaluar la respuesta al tratamiento y profundizar en el conocimiento de las bases genéticas de su patogénesis.1
El desarrollo de la citogenética molecular a través de la hibridación in situ por fluorescencia (FISH, por su sigla en inglés), se convirtió en un avance importante en el diagnóstico citogenético de las neoplasias hematológicas. Esta técnica presenta alta sensibilidad y especificidad y posibilita el análisis de células, tanto en metafase como en interfase. Esta última ventaja supera una limitación importante de la citogenética convencional, la necesidad de obtener las células en metafase. Además, permite el análisis de un gran número de células de forma rápida y la identificación de cambios estructurales más sutiles por debajo de la resolución de la citogenética convencional.2
La técnica de FISH utiliza fragmentos de secuencias de ADN, sonda marcada con fluorescencia, con el fin de localizar una secuencia complementaria en el ADN de la muestra. Existen varios tipos de sondas, cada una con una función específica según lo que se desea detectar. Se describen las sondas centroméricas (que marcan toda la región del centrómero), las sondas de pintado cromosómico (constituidas por una librería de sondas que abarcan todo el cromosoma) y las sondas de secuencia única (locus específico) que marcan regiones cromosómicas muy concretas.
Para la detección del cromosoma Filadelfia en las leucemias mieloide crónica (LMC) y linfoide aguda (LLA), se utilizan sondas de locus específicos y diferentes colores para marcar las regiones involucradas, en la búsqueda de señales híbridas para caracterizar la reorganización, tanto en metafase como en núcleos en interfase.
Una metodología similar se utiliza para la detección de la translocación (15;17) presente en la leucemia promielocítica (LPM), así como la translocación (8;21) y otras alteraciones citogenéticas específicas descritas en la clasificación de la OMS del 2008 para la leucemia mieloide aguda (LMA), como la inversión del cromosoma 16 (inv16) y los reordenamientos en 11q23.3
En la leucemia linfocítica crónica (LLC) existe un bajo índice mitótico, por lo que es difícil obtener metafases a través de la citogenética convencional. La técnica de FISH permite detectar alteraciones cromosómicas y estratificar grupos pronósticos con implicación clínica y terapéutica; ejemplo de ello son las deleciones 13q, 17p, los rearreglos en 11q, entre otras.4
En los síndromes mielodisplásicos (SMD) las anomalías cromosómicas detectadas por FISH pueden aportar información pronóstica y ser útiles para respaldar decisiones terapéuticas en algunos casos, como las deleciones 5q, 7q y la monosomía 7. 5
En este trabajo se presentan los primeros resultados de la detección de alteraciones cromosómicas a través de la introducción de la técnica de FISH en el Instituto de Hematología e Inmunología (IHI), como una herramienta más en el diagnóstico de las neoplasias hematológicas.
MÉTODOS
Se realizó un estudio prospectivo, descriptivo de tipo transversal, para identificar las alteraciones cromosómicas por técnica de FISH en muestras de sangre medular (MO) de 84 pacientes con neoplasias hematológicas, recibidas en el Laboratorio de Citogenética del IHI en el período comprendido entre julio de 2014 y abril de 2015.
La técnica de FISH se realizó con sondas comerciales marcadas directamente con diversos fluorocromos; se utilizó cada una de las sondas teniendo en cuenta la impresión diagnóstica del paciente en el momento de recepción de la muestra en el laboratorio. En tres de ellos, dada la enfermedad presentada, se realizaron dos estudios con sondas diferentes para un total de 87 estudios, distribuidos como se muestra en el cuadro:
|
Sondas |
Alteración cromosómica |
Estudios |
|
LSI BCR/ABL Dual color |
t (9;22) |
44 |
|
LSI PML/RARA Dual color |
t (15;17) |
17 |
|
RUNX1/RUNX1T1 Dual Color |
t (8;21) |
9 |
|
CBFB Break |
rearreglos en el locus CBFB (16q22) |
5 |
|
LSI MLL Dual Color |
rearreglos en el gen MLL (11q23) |
1 |
|
LSI RB1(13q14) señal naranja |
deleción del gen RB1 |
2 |
|
LSI TP53(17p13.1) señal naranja |
deleción del gen TP53 |
1 |
|
LSID7S486 Spectrum Orange/CEP 7 Spectrum Green |
deleción 7q31 |
6 |
|
LSICSF1R Spectrum Orange/D5S23,D5S721 Spectrum Green |
deleción 5q33-34 |
2 |
Preparación de la muestra
Todas las muestras fueron cultivadas por técnica de citogenética convencional6. La extensión se realizó en láminas portaobjetos y la calidad de la preparación fue verificada en microscopio de contraste de fase.
Pretratamiento de las láminas
Las láminas (debidamente identificadas) fueron sometidas a pretratamiento en solución 2XSSC (NaCl/citrato de sodio) a 37°C, durante 30 min. Posteriormente fueron deshidratadas mediante lavados sucesivos en diluciones etanólicas, al 70 %(v/v), 85 % (v/v) y un tercer lavado en 100 %. Se mantuvieron 2 min en cada lavado.
Hibridación y detección
En cada lámina se aplicaron 10 μL de sonda, se colocó un cubreobjeto y se selló con cemento de goma. Las láminas fueron ubicadas en un sistema de desnaturalización e hibridación de ADN (S-96 Quanta Biotech, qCycler). Se realizó la codesnaturalización a 72°C durante 2 min, seguido de la hibridación en cámara húmeda a 37°C durante toda la noche, por 18 horas. Al día siguiente se retiró el cubreobjeto y se realizaron dos lavados para eliminar la hibridación excedente, en 70 mL de 0,4XSSC/ 0,3 % NP40 a 72°C durante 3 min y posteriormente en 70 mL de 2XSSC/ 0,1 % NP40 a temperatura ambiente (25°C) durante 30 s.
En todos los casos se utilizó la tinción de contraste DAPI (diamidinofenilindol) para la identificación de los núcleos celulares en interfase.
Análisis
Las señales de hibridación se analizaron en un microscopio de fluorescencia OLYMPUSBX51. Los núcleos donde el marcaje era evidente fueron seleccionados para el conteo de las señales. Fueron descartados los núcleos sobrelapados o con un marcaje débil. Fue considerada señal si el marcaje estaba dividido en dos, pero la distancia entre las señales era menor que su ancho.
En cada muestra fueron analizados de100 a 200 núcleos. Se consideró positivo el resultado cuando la alteración cromosómica estuvo presente en más del 10 % de los núcleos observados, según bibliografía consultada.7,8
Para las sondas dual color, las células negativas mostraron dos señales rojas (2R) y dos verdes (2V) separadas e independientes (correspondientes a cada par cromosómico). Las células positivas mostraron una señal roja y una verde independiente, y dos señales de fusión roja-verde o amarillas (2F) al estar los dos fluorocromos unidos.
Para las sondas LSI RB1 (13q14), LSI TP53 (17p13.1) las células negativas muestran dos señales rojas y las células con la alteración cromosómica muestran una señal roja.
Para detectar la deleción 7q31 y 5q33-34, las células negativas mostraron dos señales verdes (control) y dos rojas (región de la deleción); mientras que las células positivas mostraron dos señales verdes y una roja.
Captura y procesamiento de imágenes
Se utilizó el Programa Olympus MicroDP-BSW para la captura, procesamiento y análisis de las imágenes. De cada imagen tomada se guardó una versión, como evidencia del marcaje real en los núcleos. Los resultados fueron expresados de acuerdo con la nomenclatura ISCN (del inglés: International Standing Committee on Human Cytogenetic Nomenclature 2013).9
RESULTADOS
Del total de 87 estudios realizados, en cinco no se obtuvo hibridación o resultó muy débil la señal, por lo que estos casos no resultaron útiles para el diagnóstico.
De 42 muestras marcadas con sonda LSI BCR/ABL, 34 correspondían a un posible diagnóstico de LMC y de ellas, sólo 18 resultaron positivas (figura 1); en 17 muestras se observó un patrón típico de hibridación y en una, un patrón atípico. Las ocho muestras restantes marcadas con esta sonda, eran pacientes con LLA al inicio de la enfermedad, todas fueron negativas.
Se aplicó una sonda LSI MLL a una muestra de un paciente con LLA de debut para detectar translocaciones que involucren la región 11q23; no se detectó ningún rearreglo en ese locus.
Se marcaron con sonda LSI PML/RARA para la detección de la t(15;17), un total de 17 muestras con diagnóstico de LPM. De ellas, 10 eran estudios al debut y todas resultaron positivas con patrón típico de hibridación. Siete muestras, que eran casos de revaluación, resultaron negativas (figura 2).
Ocho muestras fueron marcadas con sonda LSI RUNX1/RUNX1T1 para detectar la t(8;21); de ellas, solo una resultó positiva, la que mostró un patrón típico de señales. Para identificar la inversión del cromosoma 16 se marcaron tres muestras con la sonda LSI CBFB break; todas resultaron negativas.
En las dos muestras marcadas con sonda LSI RB1 (13q14) y en la marcada con LSI TP53 (17p13.1), no se observó la deleción.
Se observó un caso positivo con la deleción 7q31 (figura 3), de un total de seis muestras estudiadas. Las dos muestras estudiadas para detectar la deleción 5q resultaron negativas.
DISCUSIÓN
La leucemia es un trastorno clonal de las células
progenitoras hematopoyéticas, caracterizada por aberraciones genéticas
adquiridas. La formación de proteínas de fusión a partir
de reordenamientos cromosómicos, ha contribuido significativamente a
la comprensión del mecanismo molecular de la patogénesis de la
leucemia. La técnica de FISH es considerada de gran utilidad para la
detección de alteraciones cromosómicas y por tanto, desempeña
una función crucial en la selección de una terapia dirigida a
los diferentes tipos de leucemias.10
La translocación recíproca t(9;22)(q34;q11.2)
provoca la formación del denominado cromosoma Filadelfia (Ph), el cual
se encuentra presente aproximadamente en el 90 % de los pacientes con LMC. En
el 10 % restante se pueden presentar translocaciones variantes o atípicas,
como la deleción de secuencias en el cromosoma 9 derivativo, que pueden
pasar desapercibidas mediante el estudio de citogenética convencional,
por lo que el uso del FISH ayuda a confirmar el diagnóstico.11
En el presente estudio se obtuvo un menor porcentaje
de muestras positivas con la t (9;22), que en otros estudios reportados por
diferentes autores.12-14 A pesar de estos resultados, la aplicación del
FISH pudo definir la presencia o ausencia de esta translocación, lo que
facilitó el diagnóstico diferencial entre la LMC y otras neoplasias
mieloproliferativas Ph negativas, pues muchos de los pacientes presentaron trombocitosis
y leucocitosis al debut y los estudios de citogenética convencional fueron
no útiles. Esta alteración cromosómica se presenta también
en alrededor del 5 % de los pacientes pediátricos con LLA y se asocia
a un pronóstico desfavorable, lo cual cambió desde el surgimiento
de los inhibidores tirosinquinasa como el imatinib, nilotinib, entre otros.
Cuando estos medicamentos se administran a pacientes con LLA Ph+ se plantea
que el rango de remisión completa es mayor del 90 % y la supervivencia
libre de eventos es superior que la de los controles históricos.15
La LPM se caracteriza por la presencia de la
translocación recíproca t(15;17) en alrededor del 90 % de los
pacientes. Esta translocación da lugar a la formación del gen
de fusión PML/RAR? en el cromosoma 15 derivativo y tiene implicación
pronóstica, ya que estos pacientes muestran mejor respuesta al tratamiento
con ácido todo trans-retinoico.16 Todas las muestras de los pacientes
al debut de la enfermedad resultaron positivas, lo cual coincide con otros estudios
internacionales.17, 18 En el 10 % de los pacientes están descritas inserciones
crípticas que no son visibles con la citogenética convencional,
por lo que el FISH constituye una herramienta útil en el diagnóstico
de la LPM.
En el 2 % de los casos existen translocaciones
que incluyen rearreglos del gen RAR? con otros genes, como las t(11;17),t(5;17).18
En las muestras negativas a la t(15;17) pudieran estar presentes algunas de
estas translocaciones lo cual no pudo precisarse por disponer de esas sondas
fluorescentes.
La t(8;21) fue la primera alteración citogenética
descrita en la LMA. Representa un subtipo particular en la clasificación
de la OMS del 2008 con características clínicas y biológicas
específicas, asociada a un pronóstico favorable. En este estudio
se presentó en el 10 % de la muestra, lo cual coincide con la literatura
que reporta una frecuencia entre el 5 y el 10 % en este tipo de leucemia,3,
19 La detección de esta translocación es esencial para el manejo
óptimo de estos pacientes y su implicación en el diagnóstico,
pronóstico y tratamiento.20
En la LLC existe un bajo índice mitótico
in vitro de las células leucémicas, aun con la utilización
de mitógenos. La técnica de FISH es capaz de superar esta dificultad,
por lo que se convierte en una herramienta muy factible para la detección
de alteraciones cromosómicas. Esto permite el establecimiento de grupos
de riesgo citogenético, entre los que se destacan las deleciones: 13q14.3
asociada a buen pronóstico y 17p13 de pronóstico desfavorable.21,
22 En la literatura se reporta como alteración citogenética más
frecuente la deleción 13q, en alrededor del 55 % de los pacientes y en
el 7 % la deleción17p.23 Sin embargo, en el presente estudio no se encontró
ninguna alteración citogenética en los pacientes con diagnóstico
de LLC, lo que puede deberse al limitado número de la muestra.
La evaluación citogenética en los
SMD reviste importancia por su implicación pronóstica, basado
en el IPSS (del inglés: International Prognostic Scoring System) descrito
en 199724 y su revisión en el 2012 (IPSS- R). 25
La deleción heterocigótica intersticial
del cromosoma 5q (del5q) es una de las alteraciones citogenéticas más
comunes, reconocida como un subtipo en la clasificación de la OMS. Esta
deleción se asocia con un fenotipo clínico característico
y una sensibilidad terapéutica a la lenalidomida. Con el uso del FISH
se pudieron localizar dos regiones críticas que intervienen en la hematopoyesis,
la 5q31 y 5q 32-33.26
La segunda alteración más frecuente
en los SMD es la monosomía del cromosoma 7, en alrededor del 25 %, se
puede presentar como una monosomía total con peor pronóstico o
como una deleción del brazo largo (del 7q) con pronóstico intermedio.
Se reportan tres regiones la 7q 22 y dos más teloméricas la 7q
31-32 y 7q 36, en las cuales están mapeados genes supresores de tumores.27
Varios estudios multicéntricos reportan
la presencia de alteraciones citogenéticas y su implicación pronóstica,28-30
lo cual concuerda con los resultados de este estudio en el que se observó
una del 7q, a pesar de lo pequeño de la muestra.
La aplicación del análisis citogenético en el estudio de
los SMD aporta datos de valor pronóstico con importantes implicaciones
clínicas y terapéuticas, por lo que se sugiere la necesidad de
realizar el cariotipo en el momento del diagnóstico y durante la evolución
de la enfermedad.
A pesar de que la muestra estudiada es pequeña,
resulta de gran importancia la incorporación de la técnica de
FISH como una herramienta más en el diagnóstico de las neoplasias
hematológicas. Lo anterior viene dado por las ventajas que presenta respecto
a la citogenética convencional como: la mayor rapidez y sensibilidad,
su especificidad y la posibilidad de analizar un mayor número de células.
Hasta donde se conoce, estos son los primeros resultados obtenidos de la aplicación
de esta técnica en el estudio de las leucemias en Cuba.
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Recibido: mayo
28, 2015.
Aceptado: agosto 19, 2015.
Dra. Kalia Lavaut
Sánchez. Instituto de Hematología e Inmunología. Apartado
8070, La Habana, CP 10800, CUBA. Tel (537) 643 8695, 8268
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